التصنيع الأخضر لدقائق الفضة النانوية باستخدام المستخلص المائي لحبوب لقاح نبات البردي (الخريط) وتقييم فعاليته الضد بكتيريةTypha domingensis Pers.
محتوى المقالة الرئيسي
الملخص
تم الدراسة الحالية استخدام المستخلص المائي لحبوب اللقاح (الخريط) لنبات البردي Typha domingensis Pers. لمعرفة قابليته في تصنيع دقائق الفضة النانوية. والخريط هو عبارة عن مادة غذائية صفراء اللون شبه صلبة, تباع في اسواق البصرة وتؤكل من قبل السكان المحليين اساسها هو حبوب لقاح نبات البردي Typha domingensis بعد ان تكبس وتعامل ببخار الماء. اجري تفاعل الـ Gas chromatography–mass spectrometry (GC-MS) لمعرفة المركبات الفعالة في المستخلص المائي للخريط. اختبرت قابلية المستخلص المائي للخريط في تصنيع دقائق الفضة النانوية وتم الاستدلال على تكون دقائق الفضة النانوية بتحول لون خليط التفاعل من اللون الاصفر الى اللون البني.تم توصيف الدقائق المصنعة بواسطة UV-VisوFTIR وXRD وSEMوEDX . ثم اختبرت فعالياتها المضادة للبكتريا بواسطة الانتشار بالحفر على الآكارAgar Well Diffusion Method .اظهرت نتائج الـGC/MS للمستخلص المائي للخريط هو وجود المركبات الأتية: 5-Hydroxymethylfurfuralاذ بلغت الـRT% له (13.6196) يليه المركب 3-Deoxy-d-mannoic lactone وبلغت الـ RT%له (6.4285) والمركب alpha.-L-lyxo-Hexopyranoside, methyl 3-amino-2,3,6-trideoxy ذوRT% ( 4.264)والمركب 4H-Pyran-4-one, 2,3-dihydro-3,5-dihydroxy-6-methyl وله RT%هي( 3.2078) والمركب 1,3-Methylene-d-arabitolله RT% (3.1257) .تم التاكد من تكون دقائق الفضة النانوية وذلك بالطرق الطيفية حيث سجلت القمة 400nm بطيف الـUV-Vis والطبيعة المعدنية لتلك الدقائق تم بواسطة تحليل الـ XRD. اضافة الى ذلك فقد كانت الدقائق النانوية كروية الشكل وباحجام تراوحت بين20 -70 نانوميتر. وبينت نتائج الـEDX ان التركيب الكيميائي للدقائق النانوية المصنع في الدراسة الحالية هو الفضة.اختبرت قابلية دقائق الفضة النانوية المحضرة بواسطة المستخلص المائي للخريط ضد اربع انواع بكتيرية والتي شخصت بالطرق التقليدية والجزيئية باستخدام تتابعات الجين 16SrRNA ,ثلاث منها سالبة لصبغة كرام وهي Escherichia coli A1 و Escherichia coli A2و Alcaligenes faecalis AL1 والرابعة موجبة لصبغة كرام وهي Bacillus zanthoxyli B1 .
Received 10/9/2022
Revised 9/12/2022
Accepted 11/12/2022
Published Online First 20/5/2023
تفاصيل المقالة
هذا العمل مرخص بموجب Creative Commons Attribution 4.0 International License.
كيفية الاقتباس
المراجع
Elegbede J, Lateef A, Nanotechnology in the built environment for sustainable development. IOP Conference Series: Mater Sci Eng. 2020; 805: 012044. https://doi.org/10.1088/1757-899X/805/1/012044
Ahmad SA, Das SS, Khatoon A, Ansari MT, Afzal M, Hasnain MS, et al.Bactericidal Activity of Silver Nanoparticles: A Mechanistic Review. Mater Sci Energy Technol. 2020; 3: 756-769. https://doi.org/10.1016/j.mset.2020.09.002
Bruna T, MaldonadoBravo F, Jara, P, Caro N. Silver nanoparticles and their antibacterial applications. Int J Mol Sci. 2021; 22, 7202. https://doi.org/10.3390/ijms22137202
Rai M K, Deshmukh, S D, Ingle A P, Gade A K. Silver nanoparticles: the powerful nano weapon against multidrug-resistant bacteria. Environ Res Health. 2012; 112(5): 841–852. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2012.05253.x
Zulkifli NI, Muhamad M, Mohamad Zain NN, Tan WN, Yahaya N, Bustami Y, et al. A Bottom-Up Synthesis Approach to Silver Nanoparticles Induces Anti-Proliferative and Apoptotic Activities Against MCF-7, MCF-7/TAMR-1 and MCF-10A Human Breast Cell Lines. Molecules. 2020; 22; 25(18): 4332. https://doi.org/10.3390/molecules25184332
Petrucci OD, Hilton RJ, Farrer JK, Watt RK. A ferritin photochemical synthesis of monodispersed silver nanoparticles that possess antimicrobial properties. J Nanomater. 2019 (1): 1-8. https://doi.org/10.1155/2019/9535708
Parmar S, Kaur H, Singh J, Matharu AS, Ramakrishna S, Bechelany M.Advances in Green Synthesis of Ag NPs for Extenuating Antimicrobial Resistance. Nanomater. 2022 Mar 28; 12(7): 1115. https://doi.org/10.3390%2Fnano12071115
Song JY, Kim BS. Rapid biological synthesis of silver nanoparticles using plant leaf extracts. Bioprocess Biocsyst Eng. 2009; 32 (1): 79. https://doi.org/10.1007/s00449-008-0224-6
Akintelu SA, Bo Y, Folorunso AS. A Review on Synthesis, Optimization, Mechanism, Characterization, and Antibacterial Application of Silver Nanoparticles Synthesized from Plants. J Chem. 2020; 1–12. https://doi.org/10.1155/2020/3189043
Townsend CC, Guest E. Flora of Iraq Volume 8 Monocotyledones (excluding Gramineae), Ministry of Agriculture of the Republic of Iraq, Richmond, Surrey : Royal Botanic Gardens, Kew 1966, 440pp.
Raji AI, Möller C, Litthauer D, van Heerden E, Piater LA. Bacterial diversity of biofilm samples from deep mines in South Africa. Biokemistri, 2008; 20 (2): 53-62. http://www.bioline.org.br/bk
Yassin MT, Ashraf AFM, Abdulaziz A A. In Vitro Evaluation of Biological Activities and Phytochemical Analysis of Different Solvent Extracts of Punica granatum L. (Pomegranate) Peels. Plants. 2021; 10 (12): 2742. https://doi.org/10.3390/plants10122742
Asmat-CamposD, Abreu AC, Romero-Cano MS, Urquiaga-Zavaleta J, Contreras-Cáceres R, Delfín-Narciso D, et al. Unraveling the Active Biomolecules Responsible for the Sustainable Synthesis of Nanoscale Silver Particles through Nuclear Magnetic Resonance Metabolomics. ACS Sustain Chem Eng. 2020; 8, 48: 17816–17827 https://dx.doi.org/10.1021/acssuschemeng.0c06903.
Ghosh G, Panda P, Rath M, Pal A, Sharma T, Das D. GC-MS analysis of bioactive compounds in the methanol extract of Clerodendrum viscosum leaves. Pharmacognosy Res. 2015 Jan-Mar;7(1):110-3. https://doi.org/10.4103/0974-8490.147223
Keerthiga M, Anand SP. Physicochemical, Preliminary Phytochemical Analysis and Antibacterial Activity agains Clinical Pathogens of Medicinally Important Orchid Geodorum densiflorum (Lam) Schltr. Int J Pharm Pharm Sci. 2014; 6(8): 558-61. https://journals.innovareacademics.in/index.php/ijpps/article/view/1925.
Bhalla N, Ingle N, Patri SV, Haranath D. Phytochemical analysis of Moringa Oleifera leaves extracts by GC-MS and free radical scavenging potency for industrial applications. Saudi J Biol Sci. 2021; 2: 6-38. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2021.07.075
Pragatisheel, and J. Prakash. Silver Nanostructures, Chemical Synthesis Methods, and Biomedical Applications. In: Inamuddin, Asiri, A. (eds) Applications of Nanotechnology for Green Synthesis. (2020) Nanotechnology in the Life Sciences. Springer, Cham. https://doi.org/10.1007/978-3-030-44176-0_11
Afreen A, Ahmed R, Mehboob S, Tariq M, Alghamdi HA, Zahid AA, et al .Phytochemical-assisted biosynthesis of silver nanoparticles from Ajuga bracteosa for biomedical. Mater Res Expres. 2020; 7: 075404. https://doi.org/10.1088/2053-1591/aba5d0
Prakash O, Verma M, Sharma P, Kumar M, Kumari K, Singh A, et al. Polyphasic approach of bacterial classification — An overview of recent advances. Indian J Microbiol. 2007; 47(2): 98–108. https://doi.org/10.1007%2Fs12088-007-0022-x
Rahul M.Polyphasic systematics of marine bacteria and their alpha-glucosidase inhibitor activity. Ph.D. thesis. CSIR-National Chemical Laboratory, Pune-411 008, 2019, India.221pp. https://dspace.ncl.res.in:8080/xmlui/handle/20.500.12252/5847
P. Shanmuga Praba,P, Vasantha VS, Jeyasundari J, Jacob BA. Synthesis of plant-mediated silver nanoparticles using Ficus microcarpa leaf extract and evaluation of their antibacterial activities. Eur Chem Bull. 2015; 4(3): 117–120. https://doi.org/10.17628/ECB.2015.4.117-120
Anandalakshmi K, Venugobal J, Ramasamy,V. Characterization of silver nanoparticles by green synthesis method using Pedalium murex leaf extract and their antibacterial activity. Appl Nanosci. 2016; 6: 399–408. https://doi.org/10.1007/s13204-015-0449-z
Naseer QA, Xue X, Wang X, Dang S, Din SU, kalsoom , et al. Synthesis of silver nanoparticles using Lactobacillus bulgaricus and assessment of their antibacterial potential. Braz J Biol, 2021 Mar 5; 82. https://doi.org/10.1590/1519-6984.232434
Rautela A, Rani J, Debnath (Das) M. Green synthesis of silver nanoparticles from Tectona grandis seeds extract: characterization and mechanism of antimicrobial action on different microorganisms. J Anal Sci Technol. 2019; 10: 1
https://doi.org/10.1186/s40543-018-0163-z
Jemal K, Sandeep B V, Pola S. Synthesis, Characterization, and Evaluation of the Antibacterial Activity of Allophylus serratusLeaf and Leaf Derived Callus Extracts Mediated Silver Nanoparticles. J Nanomater. 2017:1–11. https://doi.org/10.1155/2017/4213275
Tufail MS, Liaqat I, Andleeb S, Naseem S, Zafar U, Sadiqa A, et al. Biogenic Synthesis, Characterization and Antibacterial Properties of Silver Nanoparticles against Human Pathogens. J Oleo Sci. 2022; 71, (2): 257-265. https://doi.org/10.5650/jos.ess21291
Femi-Adepoju A G, Dada A O, Otun KO, Adepoju AO, Fatoba OP. Green synthesis of silver nanoparticles using terrestrial fern (Gleichenia Pectinata (Willd.) C. Presl.): characterization and antimicrobial studies. Heliyon, 2019; 5(4): e01543. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e01543
Hasson SO, Salman SAK, Hassan SF, Abbas SM. Antimicrobial Effect of Eco- Friendly Silver Nanoparticles Synthesis by Iraqi Date Palm (Phoenix dactylifera) on Gram-Negative Biofilm-Forming Bacteria. Baghdad Sci J. 2021; 18 (4): 1149. https://doi.org/10.3390%2Fijms23169257
Shareef AA, Hassan ZA, Kadhim MA, Al-Mussawi AA. Antibacterial Activity of Silver Nanoparticles Synthesized by Aqueous Extract of Carthamus oxycantha M.Bieb. Against Antibiotics Resistant Bacteria. Baghdad Sci.J. 2022;19(3): 460-468. https://doi.org/10.21123/bsj.2022.19.3.0460
Mikhailova EO. Silver Nanoparticles: Mechanism of Action and Probable Bio-Application. J Funct Biomater. 2020; 26; 11(4): 84 https://doi.org/10.3390%2Fjfb11040084